实验结果:金斯瑞saRNA基于GS-saRNA-1载体合成,m5C修饰,具有不同的经过筛选验证的复制酶元件和修饰,与常规saRNA 比较,金斯瑞设计的GS-saRNA 具有更高的初始及持续蛋白表达量,表达量可以高达10倍。

经筛选与验证的复制酶元件与修饰
整合固定元件的即用模板,加速交付增强与延长的蛋白表达能力
更少量的mRNA即可实现更强更持久的蛋白表达多种载体支持多元化应用
不同免疫原性的载体可选线性mRNA | 自扩增RNA | 环状RNA | |||||
示意图 | ![]() |
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结构 | 线性,开放5'和3'端,易被核酸外切酶降解 | 线性,开放5'和3'端,易被核酸外切酶降解 | 闭环结构,无开放的5'端和3'端 不易被核酸外切酶降解 |
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核糖体招募 | 5'Cap: 启动翻译,使mRNA更稳定 |
5'Cap: 启动翻译,使mRNA更稳定 |
核糖体进入位点 (IRES): 启动翻译 |
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ORF |
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UTR | 5'端和3'端的UTR结构提升mRNA的稳定性,促进mRNA翻译 | 5'端和3'端的UTR结构提升mRNA的稳定性,复制酶促进mRNA的自我复制 | 包含IRES+PIE+其他元件 | ||||
PolyA尾 | 提升mRNA的稳定性,避免mRNA降解 | 提升mRNA的稳定性,避免mRNA降解 | 不需要 | ||||
蛋白表达量 | 强+++ | 强+++++ | 强++++ | ||||
蛋白表达半衰期 | 短 | 更长 | 长 | ||||
免疫原性 | 低 | 高 | 中等 | ||||
所需剂量 | 高 | 低 | 中等 | ||||
创新性 | 传统 | 新 | 更新 | ||||
服务名称 | 目标序列长度 | 交付量* | 纯化方式& | 载体# | 修饰 | 溶剂 | QC | saRNA 制备周期 |
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自扩增RNA | 100bp - 6kb | 100μg至200mg | LiCl | GS-saRNA-1 GS-saRNA-3 GS-saRNA-4 |
m5C或不修饰 | Sodium citrate, pH6.5 (默认0.5-2mg/ml) |
研究级-标准 研究级-升级 |
快至2周 |
* 单批次交付量,总体交付量高达g级别
& 纯化方式可升级为HPLC纯化
# 不同载体匹配不同应用
载体名称 | 加帽类型 | 推荐修饰 | 体外表达 | 体内靶向性(基于SM102-LNP配方) | ||
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HEK293T | A549 | Jurkat | ||||
GS-saRNA-1 | Cap-AU | m5C | ++++ | +++ | +++ | 脾脏、心脏 |
GS-saRNA-3 | Cap-AU | m5C或不修饰 | +++++ | +++ | + | 脾脏 |
GS-saRNA-4 | Cap-AU | m5C或不修饰 | ++++ | +++ | +++ | 脾脏 |
GS-saRNA-1:在多种细胞系中表现出高表达水平,并且具有广泛的体内表达分布。可作为常规推荐的载体,可能适用于免疫应用和蛋白替代疗法。
GS-saRNA-3:在普通细胞系中表现出非常高的表达水平,但在免疫细胞系中的表达较低。如果希望在普通细胞系中提高目标基因的表达水平,可以选择该载体。
GS-saRNA-4:其体外表达水平与GS-saRNA-1相似,但在体内表达分布上有所不同。主要在脾脏中表达,可能更适用于免疫疗法应用,例如疫苗或体内CAR疗法等。
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QC | 项目 | 检测方式 | 检测标准 | 研究级 - 标准 | 研究级 – 升级 |
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鉴定 | 外观 | 视觉观测 | 澄清无异物 | ||
RNA长度 | 毛细管电泳 (CE) | 目标长度±30% | |||
RNA长度 | 琼脂糖凝胶电泳 | 检测到目标大小的条带 | |||
Poly(A)长度 | 酶切法和CE | 目标长度±30% | |||
RNA含量 | 紫外吸收 | 目标含量±5% | |||
pH | pH计 | 目标值±0.5 | |||
缓冲液规格 | 按客户提供详情 | N/A | |||
纯度 | A260/280 | UV检测 | 1.70 ~ 2.30 | ||
加帽效率 | LC-MS | ≥ 90% | |||
纯度 | 毛细管电泳 (CE) | ≥ 70% | |||
杂质 | 内毒素 | 半定量 | < 10 EU/mg |
实验结果:金斯瑞saRNA基于GS-saRNA-1载体合成,m5C修饰,具有不同的经过筛选验证的复制酶元件和修饰,与常规saRNA 比较,金斯瑞设计的GS-saRNA 具有更高的初始及持续蛋白表达量,表达量可以高达10倍。
10 ng 的 EGFP saRNA 通过 LNP (SM102) 或 Lipofectamine™ MessengerMAX™ (Thermo) 转染到 HEK293T 细胞中。转染后 48 小时,通过荧光显微镜检测并成像 EGFP 信号,使用 Image J 软件对信号强度进行定量分析。
EGFP mRNA、circRNA 或 saRNA 通过 LNP(SM102)转染至 HEK293T、A549 或 Jurkat 细胞中。在转染后 24、48 和 72 小时,通过荧光显微镜检测 EGFP 信号,并使用 ImageJ 软件进行定量分析。在转染后48h,免疫原性相关的细胞因子通过ELISA方法进行评估。
在A549细胞中,用LNP(SM102)转染100ng EGFP mRNA、环状RNA或saRNA(saRNA-1)。通过RT-qPCR检测EGFP的RNA水平,评估普通线性mRNA和saRNA的半衰期。
SM102包裹的Fluc mRNA或saRNA通过静脉注射进入小鼠,剂量为0.25 mg/kg,每组3只小鼠。注射24小时后,小鼠通过腹腔注射100 μL的30 mg/mL D-荧光素。使用体内成像系统对小鼠进行成像,观察小鼠不同时间点的总荧光强度。
SM102-DiR标记的Fluc mRNA或saRNA通过静脉注射进入小鼠,剂量为0.25 mg/kg,每组3只小鼠。注射24小时后,小鼠通过腹腔注射100 μL的30 mg/mL D-荧光素。使用体内成像系统对小鼠进行活体成像,观察小鼠体内的总荧光分布。在此之后,小鼠被处死,成像并定量分析了脑、心脏、肺、肝、肾、淋巴结和脾的荧光分布。